实验中--动物样本如何取材及保存邮寄？

青草

动物组织样本如何保存？
1、组织样本
a、组织离体清洗后应立即固定，固定液一般10%中性福尔马林或4%多聚甲醛(尽量不要用酒精固定)，室温保存。
b、固定用的器皿必须根据样本体积而定，组织固定液的体积应是样本体积的10-15倍 ，且不宜用V型底，细长或小管固定。大组织标本应切开固定，以免中间部分自容腐败，如有特殊要求，请自行根据实验要求选择其他处理方式。
c、如果是冰冻切片标本，必须新鲜(处理步骤：组织离体后用OCT包埋，-80℃保存。送检过程中必须有足够多干冰或冰袋)。
d、特殊的组织需要用特定的固定液，避免样本发生变化，影响后续检测。（参考下图）



e、胃、肠道的内容物处理需特别注意：切忌不能用挤的方式 ，会破坏黏膜 ，可以用针打10%中性福尔马林或者4%多聚甲醛到胃和盲肠 里面去固定一会，半个小时切开用10%氯化钠溶液清洗 ，然后再固定。
f、对于皮肤、肺等比较轻，容易漂浮在固定液上面的组织：可以选择在固定液上面放沾湿的棉花团压住 ，避免组织漂浮在固定液上导致固定不充分。或者再完整的肺组织离体后，往主支气管中灌固定液冲洗整个肺部，并使肺部充盈 ，然后把充盈后的整肺放入固定液中送检。

动物组织样本如何寄送？
首先注意寄送过来的样本为固定好、且按照样本保存要求执行的。
a、固定液固定的组织样本、组织蜡块、白片及其他非荧光染色玻片为常温寄送。玻片在包装时注意放入纸巾或气泡膜防震。
b、4℃保存的样本在寄送时选择冰袋运输，在保存和运输过程中固定液切勿冷冻结冰。
c、荧光染色玻片送检：置于载玻片盒中低温避光送检，可在里面放入纸巾或气泡膜防震 ，外面包一层锡纸避光，放足够冰块或干冰低温送检。
d、冰冻切片样本送检过程中必须有足够多干冰，选用保温泡沫箱进行包装。
e、送检的标本应具有物种、标本类型、标本离体时间、固定时间、固定类型、组织部位等信息，信息必须与送检纸质信息一致并清晰，并确定组织是否固定完全，如果难以判断，请与病理实验室工作人员联系咨询。
f、体积过小过薄的组织样本易丢失，不建议送检 (如厚度＜1mm的样本)。
取材中各器脏常规采集要求：
1、取材前需进行动物麻醉、放血，避免组织内部血液太多，固定不充分;
2、动物死亡、组织离体后尽快(不可超过10分钟)固定或冻存，避免组织出现自溶;
3、取材需取同一脏器同一部位，后期实验结果才具有可比性;
4、取材时器械要锐利，避免出现挤压、刮抹而造成的组织变形、缺损;
5、组织浸入固定液前需生理盐水冲洗，避免组织固定不充分而影响组织基本形态;
6、取材后的组织块不宜过大，一 般不超过长X宽X高:2.0cmX2.0cmX0.5cm。



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